產品簡介

COSMOSIL Cholester色譜柱 是反相體(ti) 係的HPLC柱，膽甾醇鍵合矽膠填料，具有和傳(chuan) 統的烷基鍵合C18、C30矽膠填料一樣的疏水性，但是在相同的分析條件下，Cholester對疏水化合物的立體(ti) 選擇性好。

1. 去除色譜柱內(nei) 的緩衝(chong) 液，鹽，酸的方法：使用不含緩衝(chong) 液，鹽，酸的流動相衝(chong) 洗10-15分鍾。
   例：流動相為(wei) 甲醇/磷酸緩衝(chong) 液（20mmol/L） =50/50時，就使用甲醇/水 =50/50衝(chong) 洗

2. 衝(chong) 洗色譜柱內(nei) 附著物的方法，基線不穩時的解決(jue) 方法

• 樣本不是蛋白質時，使用甲醇或四氫呋喃衝(chong) 洗。

• 樣品是蛋白質時，使用含0.1%三氟·乙酸的50-70%的乙腈/水衝(chong) 洗

1. 短期（數日）保存：
   使用不含緩衝(chong) 液，鹽，酸的流動相衝(chong) 洗10-15分鍾。保存。
   例：流動相為(wei) 甲醇/磷酸緩衝(chong) 液（20mmol/L） =50/50時，就使用甲醇/水 =50/50衝(chong) 洗

2. 長期（1個(ge) 月以上）保存：
   使用後，先用不含酸和鹽的流動相清洗色譜柱，再將流動相置換為(wei) 乙腈/水=70/30或 甲醇/水=70/30，保存。

除堿溶液和強酸溶液（pH1.5以下）以外都可以使用。（強堿溶液會(hui) 使矽膠溶化，強酸溶液會(hui) 使固定相脫落）
注意點：
溶劑粘度過高會(hui) 導致壓力上升，請將壓力控製在20Mpa以下。 使用酸性流動相或凝固點高的溶劑後，必須清洗色譜柱。

• 一般情況下緩衝(chong) 液濃度為(wei) 0.005~0.02 mol/L即可。

• 流動相在使用前一定要通過0.5μm以下的濾膜過濾。

• 蛋白質反相模式分析時，請使用大孔徑色譜柱（孔隙直徑300Å) COSMOSIL Protein - R（粒徑5μm）。